Caracterización molecular de materiales promisorios de mejoramiento de naranjilla Solanum quitoense

Registros biológicos
Última versión publicado el 12 de julio de 2024
Fecha de publicación:
12 de julio de 2024
Publicado por:
Ninguna organización
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Descripción

La naranjilla, Solanum quitoense Lam, es una especie vegetal perenne perteneciente a la familia Solanaceae, sección Lasiocarpa, la cual se encuentra mayoritariamente en zonas subtropicales. Gracias a sus contenidos nutricionales, la naranjilla es consumida en todo el Ecuador. Las provincias de Sucumbíos, Pastaza, Napo, y Morona Santiago poseen el 93% de la producción nacional de naranjilla, por lo tanto, el cultivo de este frutal representa una importante fuente de ingresos a nivel nacional e internacional para el sector agroindustrial. No obstante, la producción de naranjilla se ha visto afectada por la presencia de microorganismos patógenos que, al atacar a los cultivos, provocan la formación de frutos de pésima calidad y no aptas para su consumo. EL Programa Nacional de Fruticultura del INIAP y el Departamento de Protección Vegetal han trabajado en la generación de nuevos materiales mejorados de naranjilla desde el año 2005. En el presente estudio se realizó la caracterización molecular de muestras de naranjilla pertenecientes a este programa de mejoramiento. Las muestras procesadas fueron caracterizadas genotípicamente con el fin de determinar la variabilidad genética y asignación poblacional, para establecer materiales con fines de identificación de genes de resistencia a nematodos y Fusarium. Se realizó la caracterización molecular de materiales promisorios de mejoramiento de naranjilla correspondiente a 345 materiales de naranjilla provenientes de 10 cruzamientos (N2, N4, N5, N6 , N8, N12, N3, F, TUM, A), con un set un set de 18 marcadores microsatélites generados por el INIAP. Se realizó la amplificación del material con la metodología M13 Tailing y el uso del analizador de ADN Li-COR 4300s. La genotipificación se realizó en el programa SAGA. La caracterización molecular generó 6210 data points analizados en el programa PowerMarker V3.25. Para los cruzamientos validados molecularmente se realizó el análisis de asignación poblacional y validación de parentales, para este propósito se utilizó con el programa STRUCTURE. Se analizaron las poblaciones N8 (S. hiporodium x S. quitoense x S. quitoense) y los materiales del lote experimental de Tumbaco TUM (S.quitoense x S.hirtum). Se identificaron 17 materiales con altas purezas para las especies hiporodium S.quitoense e S.hirtum, e híbridos S.hirtum x S.quitoense y S. hiporodium x S. quitoense. Estos materiales se utilizarán para el análisis de transcriptoma para la identificación de genes de resistencia a nematodos y Fusarium.

Registros

Los datos en este recurso de registros biológicos han sido publicados como Archivo Darwin Core(DwC-A), el cual es un formato estándar para compartir datos de biodiversidad como un conjunto de una o más tablas de datos. La tabla de datos del core contiene 345 registros.

también existen 2 tablas de datos de extensiones. Un registro en una extensión provee información adicional sobre un registro en el core. El número de registros en cada tabla de datos de la extensión se ilustra a continuación.

Occurrence (core)
345
Preparation 
345
dnaDerivedData 
345

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Versiones

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¿Cómo referenciar?

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EDUARDO M, BUITRON J, OCHOA J, VITERI P (2024). Caracterización molecular de materiales promisorios de mejoramiento de naranjilla Solanum quitoense. Version 1.0. Ninguna organización. Occurrence dataset. https://patrimonio.ambiente.gob.ec/iptmae_permisos/resource?r=naranjilla_coleccion&v=1.0

Derechos

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Registro GBIF

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Palabras clave

Solanum quitoense; naranjilla; microsatelites; genotipificación; variabilidad genética

Contactos

MORILLO EDUARDO
  • Originador
  • RESPONSABLE TÉCNICO
INIAP
  • PANAMERICANA SUR KM1
MACHACHI
PICHINCHA
EC
  • 023006284
JOHANNA BUITRON
  • Originador
  • TECNICO
INIAP
  • PANAMERICANA SUR KM1
MACHACHI
PICHINCHA
EC
  • 023006284
JOSE OCHOA
  • Originador
  • INVESTIGADOR PRINCIPAL
INIAP
  • PANAMERICANA SUR KM1
MACHACHI
EC
  • 230006433
PABLO VITERI
  • Originador
  • TÉCNICO
INIAP
  • AV. INTEROCEÁNICA KM. 15 Y ELOY ALFARO_TUMBACO
QUITO
PICHINCHA
EC
  • 222373701
RAUL JARAMILLO
  • Punto De Contacto
  • DIRECTOR EJECUTIVO (DIRECTOR DE INVESTIGACIONES ABRIL 2021)
INIAP
  • Av. Eloy Alfaro N30-350 y Av. Amazonas Edificio MAGAP – 4to. piso
QUITO
PICHINCHA
EC
Carla Espinosa
  • Proveedor De Contenido
  • tesista
UDLA
  • QUERI Y ELOY ALFARO
QUITO
BIOTECNOLOGIA
EC

Cobertura geográfica

PICHINCHA

Coordenadas límite Latitud Mínima Longitud Mínima [-90, -180], Latitud Máxima Longitud Máxima [90, 180]

Cobertura taxonómica

N/A

Reino Plantae
Filo Tracheophyta
Class Magnoliopsida
Orden Solanales
Familia Solanaceae

Cobertura temporal

Fecha Inicial / Fecha Final 2021-04-21 / 2022-04-21

Datos del proyecto

La naranjilla, Solanum quitoense Lam, es una especie vegetal perenne perteneciente a la familia Solanaceae, sección Lasiocarpa, la cual se encuentra mayoritariamente en zonas subtropicales. Gracias a sus contenidos nutricionales, la naranjilla es consumida en todo el Ecuador. Actualmente se cultivan distintas variedades de naranjilla, las cuales son comercializadas a nivel regional y extranjera. Las provincias de Sucumbíos, Pastaza, Napo, y Morona Santiago poseen el 93% de la producción nacional de naranjilla, por lo tanto, el cultivo de este frutal representa una importante fuente de ingresos a nivel nacional e internacional para el sector agroindustrial. No obstante, la producción de naranjilla se ha visto afectada por la presencia de microorganismos patógenos que, al atacar a los cultivos, provocan la formación de frutos de pésima calidad y no aptas para su consumo. Por esta razón que el Programa Nacional de Fruticultura del INIAP y el Departamento de Protección Vegetal han trabajado en la generación de nuevos materiales mejorados de naranjilla desde el año 2005. En el presente estudio se realizó la extracción, cuantificación y validación de muestras de S. quitoense pertenecientes a este programa de mejoramiento. Las muestras procesadas fueron caracterizadas genotípicamente con el fin de determinar la variabilidad genética, específicamente de genes de resistencia a nematodos y Fusarium. En el estudio se utilizó un set de marcadores microsatélites sintetizados por El INIAP, los cuales fueron utilizados en cocteles dúplex y tríplex y la genotipificación se llevó a cabo mediante la utilización del programa SAGA. Posteriormente se utilizaron 2 programas estadísticos: Power Marker V3.25 y GenAlex V6.5, los cuales permitirán incrementar la eficiencia de selección de las especies enfocadas en encontrar soluciones a la baja productividad y calidad de la especie.

Título Caracterización molecular de materiales promisorios de mejoramiento de naranjilla Solanum quitoense
Identificador MAAE-DBI-CM-2021-0157
Descripción del área de estudio Las muestras de naranjilla se recolectaron en 2 zonas. Las muestras pertenecientes a la clase F y TUM fueron recolectadas en la granja Experimental Tumbaco, mientras que, las codificadas A y N fueron recolectadas en la Estación Experimental Santa Catalina.

Métodos de muestreo

En el caso de las muestras de las poblaciones F y TUM se recolectaron 2 hojas jóvenes, las cuales fueron colocadas en bolsas heméticas con sílica gel y almacenadas en oscuridad hasta su deshidratación. Una vez secas las muestras, se colocaron en fundas de papel hasta su extracción. En el caso de las muestras de las poblaciones N y A se recolectaron 0.05 gramos de cada individuo directamente en tubos Eppendorf de 2 ml, los cuales fueron congelados a -80 hasta su extracción.

Área de Estudio Las muestras de naranjilla se recolectaron en la provincia de Pichincha: Cantón Mejía, parroquia cutuglagua, panamericana sur Km 1. Cantón Quito, parroquia Tumbaco, Av. Interoceánica km. 15 y Eloy Alfaro

Descripción de la metodología paso a paso:

  1. Se analizaron materiales segregantes seleccionados de naranjilla del programa de mejoramiento del INIAP. Se empleó el protocolo de extracción de ADN dispuesto por Ferreira y Grattapaglia (1998). La cuantificación de ADN genómico se realizó mediante la técnica de espectrofotometría empleando el equipo EPOCH™ de Biotek® para microplacas, el cual emplea el programa GENE5 para la lectura. Una vez obtenidas las concentraciones de ADN se realizaron diluciones a 5 ng/uL de ADN para la posterior validación con el primer ISSR844 siguiendo la metodología descrita por Morillo y Miño, 2011. Para el genotipaje, se amplificaron las muestras de ADN con marcadores seleccionados con la metodología M13 Tailing según lo descrito en Morillo y Miño 2011. Los productos de PCR se corrieron en geles de poliacrilamida en el analizador LI-COR 4300s. La imagen obtenida fue importada al software SAGA GT para su edición y genotipaje. Se obtuvo una matriz genotípica a partir del LI-COR SAGA software, la cual fue depurada en base a los motifs de cada microsatélite, esta matriz fue la base para los diferentes análisis estadísticos. Para el análisis de diversidad genética se utilizaron los siguientes paquetes informáticos: Power Marker V3.25 (Liu, K., & Muse, 2005) y GenAlex V6.5 (Peakall & Smouse, 2012). Los análisis multivariados que se realizaron para los segregantes de naranjilla fueron análisis de coordenadas principales (ACoP) y análisis de conglomerados (AC), para este propósito se utilizó el programa informático NTSYS V 2.1 (Rohlf, 2002). La asignación de genotipos a poblaciones predeterminadas, se realizaron con el software STRUCTURE vs. 2. 3.4 desarrollado por (Pritchard et al., 2000).

Datos de la colección

Nombre de la Colección COLECCION ADN NARANJILLA INIAP
Métodos de preservación de los ejemplares Congelado

Referencias bibliográficas

  1. Ferreira, M.E. and Grattapaglia, D. (1998) Introdução ao uso de marcadores moleculares em análise genética. 3rd Edition, EMBRAPA—CENARGEN, Brasília
  2. Liu, K., & Muse, S. V. (2005). PowerMarker: an integrated analysis environment for genetic marker analysis. Bioinformatics, 2128–2129.
  3. Rohlf, J. (2002). Numerical taxonomy and Multivariate analysis system version 2.1.. Department of ecology and evolution state Universiti of New York
  4. Morillo E. y Miño G. (2011). Marcadores Moleculares en Biotecnología Agrícola: Manual de procedimientos y técnicas en INIAP. Manual No. 91. Instituto Nacional Autónomo de Investigaciones Agropecuarias, Estación Experimental Santa Catalina. Quito. 121 p.
  5. Peakall, R., & Smouse, P. E. (2012). GenAlEx 6.5: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research—an update.Bioinformatics, (28/19).
  6. Liu, K., & Muse, S. V. (2005). PowerMarker: an integrated analysis environment for genetic marker analysis. Bioinformatics, 2128–2129.
  7. Pritchard, J., Stephens, M., & Donnelly, P. (2000). Inference of Population Structure using multilocus genotype data. Genetics, (155):945-959.